<?xml version="1.0" encoding="UTF-8"?>
<!DOCTYPE root>
<article xmlns:mml="http://www.w3.org/1998/Math/MathML" xmlns:xlink="http://www.w3.org/1999/xlink" xmlns:xsi="http://www.w3.org/2001/XMLSchema-instance" xmlns:ali="http://www.niso.org/schemas/ali/1.0/" article-type="research-article" dtd-version="1.2" xml:lang="en"><front><journal-meta><journal-id journal-id-type="publisher-id">Journal of Clinical Practice</journal-id><journal-title-group><journal-title xml:lang="en">Journal of Clinical Practice</journal-title><trans-title-group xml:lang="ru"><trans-title>Клиническая практика</trans-title></trans-title-group></journal-title-group><issn publication-format="print">2220-3095</issn><issn publication-format="electronic">2618-8627</issn><publisher><publisher-name xml:lang="en">Eco-Vector</publisher-name></publisher></journal-meta><article-meta><article-id pub-id-type="publisher-id">10416</article-id><article-id pub-id-type="doi">10.17816/clinpract944-14</article-id><article-categories><subj-group subj-group-type="toc-heading" xml:lang="en"><subject>Original Study Articles</subject></subj-group><subj-group subj-group-type="toc-heading" xml:lang="ru"><subject>Оригинальные исследования</subject></subj-group><subj-group subj-group-type="article-type"><subject>Research Article</subject></subj-group></article-categories><title-group><article-title xml:lang="en">Comparative study of the effects of mesenchymal stem cells with different delivery methods in an experimental model of lung fibrosis</article-title><trans-title-group xml:lang="ru"><trans-title>Сравнительное исследование эффектов мезенхимальных стволовых клеток при различных методах доставки в экспериментальной модели фиброза легких</trans-title></trans-title-group></title-group><contrib-group><contrib contrib-type="author"><contrib-id contrib-id-type="orcid">https://orcid.org/0000-0003-1031-6933</contrib-id><contrib-id contrib-id-type="spin">2229-7100</contrib-id><name-alternatives><name xml:lang="en"><surname>Averyanov</surname><given-names>A. V.</given-names></name><name xml:lang="ru"><surname>Аверьянов</surname><given-names>Александр Вячеславович</given-names></name></name-alternatives><address><country country="RU">Russian Federation</country></address><bio xml:lang="ru"><p>докт. мед. наук, главный научный сотрудник отдела фундаментальной пульмонологии</p></bio><email>averyanovav@mail.ru</email><xref ref-type="aff" rid="aff1"/><xref ref-type="aff" rid="aff2"/></contrib><contrib contrib-type="author"><contrib-id contrib-id-type="orcid">https://orcid.org/0000-0003-2766-9030</contrib-id><name-alternatives><name xml:lang="en"><surname>Konoplyannikov</surname><given-names>A. G.</given-names></name><name xml:lang="ru"><surname>Коноплянников</surname><given-names>Анатолий Георгиевич</given-names></name></name-alternatives><address><country country="RU">Russian Federation</country></address><bio xml:lang="ru"><p>докт. биол. наук, профессор, главный научный сотрудник</p></bio><email>konopl@obninsk.ru</email><xref ref-type="aff" rid="aff3"/></contrib><contrib contrib-type="author"><contrib-id contrib-id-type="orcid">https://orcid.org/0000-0002-7445-8319</contrib-id><contrib-id contrib-id-type="spin">3259-9332</contrib-id><name-alternatives><name xml:lang="en"><surname>Zabozlaev</surname><given-names>F. G.</given-names></name><name xml:lang="ru"><surname>Забозлаев</surname><given-names>Фёдор Георгиевич</given-names></name></name-alternatives><address><country country="RU">Russian Federation</country></address><bio xml:lang="ru"><p>докт. мед. наук, заведующий патологоанатомическим отделением</p></bio><email>fzab@mail.ru</email><xref ref-type="aff" rid="aff2"/></contrib><contrib contrib-type="author"><name-alternatives><name xml:lang="en"><surname>Sotnikova</surname><given-names>A. G.</given-names></name><name xml:lang="ru"><surname>Сотникова</surname><given-names>Анна Геннадьевна</given-names></name></name-alternatives><address><country country="RU">Russian Federation</country></address><bio xml:lang="ru"><p>заведующая пульмонологическим отделением</p></bio><email>sotnikoffaa@gmail.com</email><xref ref-type="aff" rid="aff1"/><xref ref-type="aff" rid="aff2"/></contrib><contrib contrib-type="author"><contrib-id contrib-id-type="orcid">https://orcid.org/0000-0002-7573-3554</contrib-id><contrib-id contrib-id-type="spin">5951-8780</contrib-id><name-alternatives><name xml:lang="en"><surname>Danilevskaya</surname><given-names>O. V.</given-names></name><name xml:lang="ru"><surname>Данилевская</surname><given-names>Олеся Васильевна</given-names></name></name-alternatives><address><country country="RU">Russian Federation</country></address><bio xml:lang="ru"><p>старший научный сотрудник лаборатории патологической анатомии</p></bio><email>danless@mail.ru</email><xref ref-type="aff" rid="aff1"/><xref ref-type="aff" rid="aff2"/></contrib><contrib contrib-type="author"><contrib-id contrib-id-type="orcid">https://orcid.org/0000-0003-1180-2343</contrib-id><contrib-id contrib-id-type="spin">9211-6391</contrib-id><name-alternatives><name xml:lang="en"><surname>Konoplyannikov</surname><given-names>M. A.</given-names></name><name xml:lang="ru"><surname>Коноплянников</surname><given-names>Михаил Анатольевич</given-names></name></name-alternatives><address><country country="RU">Russian Federation</country></address><bio xml:lang="ru"><p>канд. биол. наук, заведующий лабораторией клеточных технологий</p></bio><email>mkonopl@mail.ru</email><xref ref-type="aff" rid="aff2"/></contrib><contrib contrib-type="author"><contrib-id contrib-id-type="spin">9734-2366</contrib-id><name-alternatives><name xml:lang="en"><surname>Tatarsky</surname><given-names>A. R.</given-names></name><name xml:lang="ru"><surname>Татарский</surname><given-names>Алексей Романович</given-names></name></name-alternatives><address><country country="RU">Russian Federation</country></address><bio xml:lang="ru"><p>докт. мед. наук, профессор, руководитель образовательного центра</p></bio><email>averyanovav@mail.ru</email><xref ref-type="aff" rid="aff1"/></contrib></contrib-group><aff-alternatives id="aff1"><aff><institution xml:lang="en">Research Institute of Pulmonology of the Federal Medical-Biological Agency of Russia</institution></aff><aff><institution xml:lang="ru">Научно-исследовательский институт пульмонологии Федерального медико-биологического агентства России</institution></aff></aff-alternatives><aff-alternatives id="aff2"><aff><institution xml:lang="en">Federal Research Clinical Center of the Federal Medical-Biological Agency of Russia</institution></aff><aff><institution xml:lang="ru">Федеральный научно-клинический центр специализированных видов медицинской помощи и медицинских технологий Федерального медико-биологического агентства России</institution></aff></aff-alternatives><aff-alternatives id="aff3"><aff><institution xml:lang="en">National Medical Research Radiological Center</institution></aff><aff><institution xml:lang="ru">Национальный медицинский исследовательский центр радиологии</institution></aff></aff-alternatives><pub-date date-type="pub" iso-8601-date="2018-12-15" publication-format="electronic"><day>15</day><month>12</month><year>2018</year></pub-date><volume>9</volume><issue>4</issue><issue-title xml:lang="en"/><issue-title xml:lang="ru">Клиническая практика</issue-title><fpage>4</fpage><lpage>14</lpage><history><date date-type="received" iso-8601-date="2018-12-05"><day>05</day><month>12</month><year>2018</year></date><date date-type="accepted" iso-8601-date="2018-12-18"><day>18</day><month>12</month><year>2018</year></date></history><permissions><copyright-statement xml:lang="en">Copyright ©; 2018, Averyanov A.V., Konoplyannikov A.G., Zabozlaev F.G., Sotnikova A.G., Danilevskaya O.V., Konoplyannikov M.A., Tatarsky A.R.</copyright-statement><copyright-statement xml:lang="ru">Copyright ©; 2018, Аверьянов А.В., Коноплянников А.Г., Забозлаев Ф.Г., Сотникова А.Г., Данилевская О.В., Коноплянников М.А., Татарский А.Р.</copyright-statement><copyright-year>2018</copyright-year><copyright-holder xml:lang="en">Averyanov A.V., Konoplyannikov A.G., Zabozlaev F.G., Sotnikova A.G., Danilevskaya O.V., Konoplyannikov M.A., Tatarsky A.R.</copyright-holder><copyright-holder xml:lang="ru">Аверьянов А.В., Коноплянников А.Г., Забозлаев Ф.Г., Сотникова А.Г., Данилевская О.В., Коноплянников М.А., Татарский А.Р.</copyright-holder><ali:free_to_read xmlns:ali="http://www.niso.org/schemas/ali/1.0/"/><license><ali:license_ref xmlns:ali="http://www.niso.org/schemas/ali/1.0/">https://creativecommons.org/licenses/by-nc-nd/4.0</ali:license_ref></license></permissions><self-uri xlink:href="https://clinpractice.ru/clinpractice/article/view/10416">https://clinpractice.ru/clinpractice/article/view/10416</self-uri><abstract xml:lang="en"><p><bold>Background:</bold> Transplantation of mesenchymal stem cells (MSCs) is one of the most promising directions in the treatment of idiopathic pulmonary fibrosis. In experimental small animal studies, intravenous and endobronchial (installation) techniques are used for the cell preparation delivery, while in humans inhalation of drugs is the simplest and most available method.</p> <p><bold>Aim:</bold> The aim of the study was to determine the optimal type of a nebulizer for viability of MSCs during nebulization, followed by a comparison of the effects of inhalation and intravenous delivery methods in a standard model of bleomycin pulmonary fibrosis in rabbits.</p> <p><bold>Methods:</bold> At the first stage, the survival of MSCs was assessed ex vivo after 10 minutes of compressor, ultrasound and mesh nebulization. Subsequently we used a nebulizer, which showed the best result in the cells, viability. At the next stage аfter bronchoscopic installation of bleomycin, 5 rabbits received intravenous transplantation of 2×10<sup>6</sup> allogeneic BMMSCs, other 5 rabbits — 2×10<sup>7 </sup>MSCs inhaled via a compressor nebulizer; the control healthy and bleomycin groups included 5 animals each.</p> <p><bold>Results:</bold> The highest degree of viability of MSC was maintained after passing via the compressor nebulizer (72%), a significantly lower survival rate was observed in ultrasonic nebulization (20%) and no live cells were detected after mesh nebulization. Both groups treated with MSC had a significantly lower fibrosis index on the Ashcroft morphometric scale than the control group of bleomycin fibrosis. Collagen expression in the lung tissue was significantly higher in all the groups with bleomycin injury, but in animals which underwent MSC inhalation, it was significantly different (0.51 point) from the bleomycin group without treatment (2.1 points). The level of neutrophils in the BAL fluid was significantly lower in animals which received the intravenous MSC therapy. The levels of TNF-α and TGF-β1 in the BAL fluids tended to decrease in the treatment groups, but did not differ significantly from control.</p> <p><bold>Conclusions:</bold> The highest survival rate of MSCs is observed when using a compressor nebulizer, which apparently should be considered as the best way for delivering cells to the respiratory tract. Both inhalation and intravenous administration of MSCs cause similar effects of inhibiting the development of bleomycin-induced pulmonary fibrosis, which indicates the possibility of using both ways of cell delivery without loss of effectiveness.</p></abstract><trans-abstract xml:lang="ru"><p><bold>Обоснование.</bold> Одним из перспективных направлений лечения идиопатического легочного фиброза является трансплантация мезенхимальных стволовых клеток. В экспериментальных исследованиях на мелких животных используются внутривенный и эндобронхиальный (инсталляции) методы доставки клеточного препарата, в то время как у человека наиболее простым и доступным является ингаляционный способ доставки лекарств.</p> <p><bold>Цель</bold> — определение оптимального типа небулайзера для сохранения жизнеспособных мезенхимальных стволовых клеток (МСК) при распылении с последующим сравнением эффектов ингаляционного и внутривенного методов доставки на стандартной модели блеомицинового легочного фиброза у кроликов.</p> <p><bold>Методы.</bold> На первом этапе проводилась оценка выживаемости МСК ex vivo после 10-минутной небулизации через компрессорный, ультразвуковой и сетчатый (меш) небулайзеры. В дальнейшем использовался небулайзер, продемонстрировавший сохранность наибольшего числа клеток после распыления. На втором этапе, после бронхоскопической инсталляции блеомицина, 5 кроликов получили в заднюю правую долю внутривенную трансплантацию 2×10<sup>6</sup> аллогенных МСК, 5 — 2×10<sup>7</sup> МСК ингаляционно через компрессорный небулайзер; по 5 животных использовались в качестве здорового и блеомицинового контроля без лечения.</p> <p><bold>Результаты.</bold> Наибольшая степень жизнеспособности МСК сохранялась после прохождения через компрессорный небулайзер (72%), существенно меньшая выживаемость наблюдалась при ультразвуковой небулизации (20%) и не определялось живых клеток после меш-небулизации. Обе группы, получавшие лечение МСК, имели достоверно более низкий индекс фиброза по морфометрической шкале Эшкрофта, чем контрольная группа блеомицинового фиброза. Экспрессия коллагена в ткани легких была существенно выше во всех группах с блеомициновой травмой, но у животных при ингаляционном введении МСК она достоверно отличалась (0,51 балла) от группы блеомицина без лечения (2,1 балла). Уровень нейтрофилов в жидкости бронхоальвеолярного лаважа был достоверно ниже у животных, получивших внутривенную терапию МСК. Уровни TNFα и TGFβ1 в жидкости бронхоальвеолярного лаважа имели тенденцию к уменьшению в группах лечения, но достоверно не различались от контроля.</p> <p><bold>Выводы.</bold> Наибольшая выживаемость МСК наблюдается при прохождении через компрессорный небулайзер, который, по-видимому, следует рассматривать в качестве оптимального средства для доставки клеток в дыхательные пути. Как при ингаляционном, так и при внутривенном введении МСК наблюдаются сходные эффекты — торможение развития блеомицининдуцированного фиброза легких, что свидетельствует о возможности использования обоих путей доставки клеток без потери эффективности.</p></trans-abstract><kwd-group xml:lang="en"><kwd>mesenchymal stem cells</kwd><kwd>pulmonary fibrosis</kwd><kwd>bleomycin</kwd><kwd>animal models</kwd><kwd>nebulizer</kwd></kwd-group><kwd-group xml:lang="ru"><kwd>мезенхимальные стволовые клетки</kwd><kwd>легочный фиброз</kwd><kwd>кролики</kwd><kwd>небулайзер</kwd></kwd-group><funding-group/></article-meta></front><body></body><back><ref-list><ref id="B1"><label>1.</label><mixed-citation>Raghu G, Collard HR, Egan JJ, et al. An official ATS/ERS/JRS/ALAT statement: idiopathic pulmonary fibrosis: evidence-based guidelines for diagnosis and management. Am J Respir Crit Care Med. 2011;183(6):788–824. doi: 10.1164/rccm.2009-040GL.</mixed-citation></ref><ref id="B2"><label>2.</label><mixed-citation>Navaratnam V, Fleming KM, West J, et al. The rising incidence of idiopathic pulmonary fibrosis in the U.K. Thorax. 2011;66(6):462–467. doi: 10.1136/thx.2010.148031.</mixed-citation></ref><ref id="B3"><label>3.</label><mixed-citation>American Thoracic Society; European Respiratory Society. American Thoracic Society/European Respiratory Society international multidisciplinary consensus classification of the idiopathic interstitial pneumonias. Am J Respir Crit Care Med. 2002;165(2):277–304. doi: 10.1164/ajrccm.165.2.ats01.</mixed-citation></ref><ref id="B4"><label>4.</label><mixed-citation>Toonkel RL, Hare JM, Matthay MA, Glassberg MK. Mesenchymal stem cells and idiopathic pulmonary fibrosis. Potential for clinical testing. Am J Respir Crit Care Med. 2013;188(2):133–140. doi: 10.1164/rccm.201207-1204PP.</mixed-citation></ref><ref id="B5"><label>5.</label><mixed-citation>Moodley Y, Ilancheran S, Samuel C, et al. Human amnion epithelial cell transplantation abrogates lung fibrosis and augments repair. Am J Respir Crit Care Med. 2010;182(5):643–651. doi: 10.1164/rccm.201001-0014OC.</mixed-citation></ref><ref id="B6"><label>6.</label><mixed-citation>Murphy S, Lim R, Dickinson H, et al. Human amnion epithelial cells prevent bleomycin-induced lung injury and preserve lung function. Cell Transplant. 2011;20(6):909–923. doi: 10.3727/096368910X543385.</mixed-citation></ref><ref id="B7"><label>7.</label><mixed-citation>Reddy M, Fonseca L, Gowda S, et al. Human adipose-derived mesenchymal stem cells attenuate early stage of bleomycin induced pulmonary fibrosis: comparison with pirfenidone. Int J Stem Cells. 2016;9(2):192–206. doi: 10.15283/ijsc16041.</mixed-citation></ref><ref id="B8"><label>8.</label><mixed-citation>Awad HA, Butler DL, Boivin GP, et al. Autologous mesenchymal stem cell-mediated repair of tendon. Tissue Eng. 1999;5(3):267–277. doi: 10.1089/ten.1999.5.267.</mixed-citation></ref><ref id="B9"><label>9.</label><mixed-citation>Ashcroft T, Simpson JM, Timbrell V. Simple method of estimating severity of pulmonary fibrosis on a numerical scale. J Clin Pathol. 1988;41(4):467–470.</mixed-citation></ref><ref id="B10"><label>10.</label><mixed-citation>Yeo LY, Friend JR, McIntosh MP, et al. Ultrasonic nebulization platforms for pulmonary drug delivery. Expert Opin Drug Deliv. 2010;7(6):663–679. doi: 10.1517/17425247.2010.485608.</mixed-citation></ref><ref id="B11"><label>11.</label><mixed-citation>Martin AR, Finlay WH. Nebulizers for drug delivery to the lungs. Expert Opin Drug Deliv. 2015;12(6):889–900. doi: 10.1517/17425247.2015.995087.</mixed-citation></ref><ref id="B12"><label>12.</label><mixed-citation>Kamaruzaman NA, Kardia E, Kamaldin N, et al. The rabbit as a model for studying lung disease and stem cell therapy. Biomed Res Int. 2013;2013:691830. doi: 10.1155/2013/691830.</mixed-citation></ref><ref id="B13"><label>13.</label><mixed-citation>Degryse AL, Lawson WE. Progress toward improving animal models for idiopathic pulmonary fibrosis. Am J Med Sci. 2011;341(6):444–449. doi: 10.1097/MAJ.0b013e31821aa000.</mixed-citation></ref><ref id="B14"><label>14.</label><mixed-citation>Cargnoni A, Gibelli L, Tosini A, et al. Transplantation of allogeneic and xenogeneic placenta-derived cells reduces bleomycin induced lung fibrosis. Cell Transplant. 2009;18(4):405–422. doi: 10.3727/096368909788809857.</mixed-citation></ref><ref id="B15"><label>15.</label><mixed-citation>Lee SH, Jang AS, Kim YE, et al. Modulation of cytokine and nitric oxide by mesenchymal stem cell transfer in lung injury/fibrosis. Respir Res. 2010;11:16. doi: 10.1186/1465-9921-11-16.</mixed-citation></ref><ref id="B16"><label>16.</label><mixed-citation>Lan YW, Choo KB, Chen CM, et al. Hypoxia-preconditioned mesenchymal stem cells attenuate bleomycin-induced pulmonary fibrosis. Stem Cell Res Ther. 2015;6:97. doi: 10.1186/s13287-015-0081-6.</mixed-citation></ref><ref id="B17"><label>17.</label><mixed-citation>Rojas M, Xu J, Woods CR, et al. Bone marrow-derived mesenchymal stem cells in repair of the injured lung. Am J Respir Cell Mol Biol. 2005;33(2):145–152. doi: 10.1165/rcmb.2004-0330OC.</mixed-citation></ref><ref id="B18"><label>18.</label><mixed-citation>Xu J, Mora A, Shim H, et al. Role of the SDF-1/CXCR4 axis in the pathogenesis of lung injury and fibrosis. Am J Respir Cell Mol Biol. 2007;37(3):291–299. doi: 10.1165/rcmb.2006-0187OC.</mixed-citation></ref><ref id="B19"><label>19.</label><mixed-citation>Ortiz LA, Dutreil M, Fattman C, et al. Interleukin 1 receptor antagonist mediates the antiinflammatory and antifibrotic effect of mesenchymal stem cells during lung injury. Proc Natl Acad Sci U S A. 2007;104(26):11002–11007. doi: 10.1073/pnas.0704421104.</mixed-citation></ref><ref id="B20"><label>20.</label><mixed-citation>Cargnoni A, Piccinelli EC, Ressel L. Conditioned medium from amniotic membrane-derived cells prevents lung fibrosis and preserves blood gas exchanges in bleomycin-injured mice-specificity of the effects and insights into possible mechanisms. Cytotherapy. 2014;16(1):17–32. doi: 10.1016/j.jcyt.2013.07.002.</mixed-citation></ref><ref id="B21"><label>21.</label><mixed-citation>Rathinasabapathy A, Bruce E, Espejo A, et al. Therapeutic potential of adipose stem cell-derived conditioned medium against pulmonary hypertension and lung fibrosis. Br J Pharmacol. 2016;173(19):2859–2879. doi: 10.1111/bph.13562.</mixed-citation></ref><ref id="B22"><label>22.</label><mixed-citation>Islam MN, Das SR, Emin MT, et al. Mitochondrial transfer from bone-marrow–derived stromal cells to pulmonary alveoli protects against acute lung injury. Nat Med. 2012;18(5):759–765. doi: 10.1038/nm.2736.</mixed-citation></ref><ref id="B23"><label>23.</label><mixed-citation>Sinclair KA, Yerkovich ST, Hopkins PM, Chambers DC. Characterization of intercellular communication and mitochondrial donation by mesenchymal stromal cells derived from the human lung. Stem Cell Res Ther. 2016;7(1):91. doi: 10.1186/s13287-016-0354-8.</mixed-citation></ref></ref-list></back></article>
