Влияние состава питательной среды для культивирования бактерий и дозы препарата Bacillus subtilis 10-4 на ростовые показатели и продуктивность растений пшеницы
- Авторы: Гарипова С.Р.1,2, Пусенкова Л.И.1, Ласточкина О.В.3, Федорова К.А.1,3, Дедова М.А.1, Маркова О.В.2, Матюнина В.Д.2, Юлдашев Р.А.3
-
Учреждения:
- Башкирский научно-исследовательский институт сельского хозяйства — обособленное структурное подразделение Уфимского федерального исследовательского центра РАН
- Уфимский университет науки и технологий
- Институт биохимии и генетики — обособленное структурное подразделение Уфимского федерального исследовательского центра РАН
- Выпуск: № 3 (2023)
- Страницы: 60-69
- Раздел: Экспериментальные статьи. Регуляторы роста растений
- URL: https://clinpractice.ru/0002-1881/article/view/647025
- DOI: https://doi.org/10.31857/S0002188123030055
- ID: 647025
Цитировать
Аннотация
Инокуляция семян сельскохозяйственных культур селекционными штаммами ростстимулирующих бактерий является экологичным, низкозатратным способом повышения их урожайности, но может зависеть от некоторых биотехнологических факторов, влияющих на их физиологическую активность. К ним относятся условия культивирования бактерий и доза внесения препарата. В работе анализировали эффективность инокуляции яровой пшеницы сорта Башкирская 28 разными препаратами штамма Bacillus subtilis 10-4: 1 — водной суспензией клеток бактерий, смытых с картофельноглюкозного агара (КГА), 2 — жидкой культурой, содержащей клетки с экзометаболитами, полученной при культивировании бактерий в картофельно-глюкозном отваре (КГО), 3 — жидкой культурой бактериальных клеток, выросших в бобово-глюкозном отваре (БГО). При этом оценивали ростстимулирующий эффект от внесения высокой дозы (108 кл./мл) и малой дозы (104—105 кл./мл) бактерий в инокулюме. При сравнении препаратов, полученных с картофельно-глюкозной среды, выявлено, что положительный ростовой эффект (увеличение числа корней растений пшеницы) вызвали только высокая доза клеток препарата в КГА и обе дозы препарата в КГО, но высокая доза препарата в КГО тормозила прорастание семян до 74% (в контроле 100%). При сравнении препаратов, полученных при культивировании бактерий в КГО и БГО, выявлено, что наилучший ростовой эффект (суммарная длина корней и высота побега) был больше контроля у растений, инокулированных малой дозой препарата в КГО и большой дозой препарата в БГО. Стимулирующий эффект малой дозы препарата в БГО был меньше и распространялся только на корневую систему. Результаты лабораторных экспериментов совпали с эффективностью изученных препаратов в полевых условиях.
Применение препарата, полученного в БГО и внесенного в дозе 108 кл./мл, и препарата, полученного в КГО и внесенного в дозе 105 кл/мл, увеличивало урожай зерна в 1.6—1.7 раза при снижении интенсивности листостебельных болезней на 32 и 11% по сравнению с необработанным контролем. Препарат, полученный в БГО и внесенный в малой дозе, не обеспечил ни прибавки урожая, ни защитного эффекта по сравнению с контролем. Обсуждены возможные причины действия препаратов штамма B. subtilis 10-4, связанные с продукцией им фитогормонов в зависимости от состава среды, и с различной адаптивной способностью бактерий при культивировании на богатой и менее богатой азотом средах.
Ключевые слова
Об авторах
С. Р. Гарипова
Башкирский научно-исследовательский институт сельского хозяйства — обособленное структурное подразделение Уфимского федерального исследовательского центра РАН; Уфимский университет науки и технологий
Автор, ответственный за переписку.
Email: garipovasvetlana@gmail.com
Россия, 450059 Уфа, ул. Р. Зорге, 19; 450076 Уфа, ул. З. Валиди, 32
Л. И. Пусенкова
Башкирский научно-исследовательский институт сельского хозяйства — обособленное структурное подразделение Уфимского федерального исследовательского центра РАН
Email: l.pusenkova@mail.ru
Россия, 450059 Уфа, ул. Р. Зорге, 19
О. В. Ласточкина
Институт биохимии и генетики — обособленное структурное подразделение Уфимского федерального исследовательского центра РАН
Email: l.pusenkova@mail.ru
Россия, 450054 Уфа, просп. Октября, 71
К. А. Федорова
Башкирский научно-исследовательский институт сельского хозяйства — обособленное структурное подразделение Уфимского федерального исследовательского центра РАН; Институт биохимии и генетики — обособленное структурное подразделение Уфимского федерального исследовательского центра РАН
Email: garipovasvetlana@gmail.com
Россия, 450059 Уфа, ул. Р. Зорге, 19; 450054 Уфа, просп. Октября, 71
М. А. Дедова
Башкирский научно-исследовательский институт сельского хозяйства — обособленное структурное подразделение Уфимского федерального исследовательского центра РАН
Email: garipovasvetlana@gmail.com
Россия, 450059 Уфа, ул. Р. Зорге, 19
О. В. Маркова
Уфимский университет науки и технологий
Email: l.pusenkova@mail.ru
Россия, 450076 Уфа, ул. З. Валиди, 32
В. Д. Матюнина
Уфимский университет науки и технологий
Email: l.pusenkova@mail.ru
Россия, 450076 Уфа, ул. З. Валиди, 32
Р. А. Юлдашев
Институт биохимии и генетики — обособленное структурное подразделение Уфимского федерального исследовательского центра РАН
Email: l.pusenkova@mail.ru
Россия, 450054 Уфа, просп. Октября, 71
Список литературы
- Oukala N, Aissat K., Pastor V. Bacterial endophytes: The hidden actor in plant immune responses against biotic stress // Plants. 2021. V. 10. P. 1012. DOI: org/ https://doi.org/10.3390/plants10051012
- Maksimov I.V, Maksimova T.I., Sarvarova E.R., Blagova E.K., Popov VO. Endophytic bacteria as effective agents of new-generation biopesticides (review) // Appl. Biochem. Microbiol. 2018. V. 54. № 2. P. 128— 140. https://doi.org/10.1134/S0003683818020072
- Lastochkina O. V, AliniaeifardS., Seifikalhor M., Yuldashev R., Pusenkova L., Garipova S. Plant growth-promoting bacteria: biotic strategy to cope with abiotic stresses in wheat // Wheat production in changing environments. Responses, adaptation and tolerance / Eds. M. Hasanuzzaman, K. Nahar, M.A. Hossain. Singapore: Springer, 2019. P. 579-614. https://doi.org/10.1007/2F978-981-13-6883-7_23
- Ласточкина О.В. Адаптация и устойчивость растений пшеницы к засухе, опосредованная природными регуляторами роста Bacillus spp.: механизмы реализации и практическая значимость (обзор) // Сел.-хоз. биол. 2021. Т. 56. № 5. С. 843-867. https://doi.org/10.15389/agrobiology.2021.5.843rus
- Пусенкова Л.И., Гарипова С.Р., Ласточкина О.В., Юлдашев РА. Эффективность инокуляции семян яровой пшеницы эндофитными бактериями Bacillus subtilis 26Д // Пробл. агрохим. и экол. 2020. № 3. С. 56-64. https://doi.org/10.26178/AE.2020.19.55.005
- Азизбекян Р.Р. Использование спорообразующих бактерий в качестве биологических средств защиты растений // Биотехнология. 2013. № 1. С. 69-77.
- Ласточкина О.В., Пусенкова Л.И., Юлдашев Р.А., Ильясова Е.Ю., Aliniaeifard S. Физиолого-биохимические ответы растений сахарной свеклы (Beta vulgaris L.), зараженных грибом Alternaria alternata, на применение микробных препаратов на основе Bacillus subtilis // Сел.-хоз. биол. 2018. Т. 53. № 5. С. 958-968. https://doi.org/10.15389/agrobiology.2018.5.958rus
- Пусенкова Л.И., Гарипова С.Р., Ласточкина О.В., Федорова К.А., Марданшин И.С. Влияние эндофитных бактерий Bacillus subtilis на урожай, качество клубней и послеуборочные болезни картофеля // Агрохим. вестн. 2021. № 5. С. 73-79. https://doi.org/10.24412/1029-2551-2021-5-013
- Гарипова С.Р., Шаяхметова А.С., Ласточкина О.В., Федорова К.А., Пусенкова Л.И. Влияние инокуляции растений фасоли эндофитными бактериями Bacillus subtilis на рост проростков в модельных опытах и продуктивность в условиях Южного Предуралья // Агрохим. вестн. 2020. № 6. С. 48-53. https://doi.org/10.24411/1029-2551-2020-10085
- Иксанова М.А., Гарипова С.Р Анализ фенологии, роста и продуктивности фасоли сортов Уфимская и Золотистая при инокуляции эндофитными бактериями Bacillus subtilis в условиях Предуралья // Докл. Башкир. ун-та. 2021. Т. 6. № 3. С. 152-157. https://doi.org/10.33184/dokbsu-2021.3.2
- Lastochkina O.V, Allagulova C., Fedorova K., Koryakov I., Vladimirova A., Garshina D. Application of endophytic Bacillus subtilis and salicylic acid to improve wheat growth and tolerance under combined drought and Fusarium root rot stresses // Agronomy. 2020. V. 10. № 9. P. 1343. https://doi.org/10.3390/agronomy10091343
- Lastochkina O.V, Yuldashev R., Allagulova C., Fedorova K., Avalbaev A., Maslennikova D., Garshina D., Ivanov S, Khafizova R., Bosacchi M. Seed priming with endophytic Bacillus subtilis modulates physiological responses of two different Triticum aestivum L. cultivars under drought stress // Plants. 2020. V. 9. № 12. P. 120. https://doi.org/10.3390/plants9121810
- Maslennikova D., Lastochkina O. Contribution of ascorbate and glutathione in endobacteria bacillus subtilis-mediated drought tolerance in two Triticum aestivum L. genotypes contrasting in drought sensitivity // Plants. 2021. V. 10. № 12. P. 2557. https://doi.org/10.3390/plants10122557
- Lastochkina O.V, Pusenkova L., Garipova S., Yuldashev R., Blagova D., Khairullin R., Babaev M., Aliniaeifard S. Effects of Bacillus subtilis on some physiological and biochemical parameters of Triticum aestivum L. (wheat) under salinity // Plant Physiol. Biochem. J. 2017. V. 121. P. 80-88. https://www.sciencedirect.com/science/article/pii/S0981942817303479
- Никонов В.И., Лукманова М.А. Основные направления и результаты селекции яровой пшеницы в Башкирском НИИСХ // Достиж. науки и техн. АПК. 2010. № 1. С. 12-14. https://www.elibrary.ru/item.asp?id=15100800
- Коряковцева Л.А., Волкова Л.В., Харина А.В. Сорта коллекции ВИР как источники ценных свойств в селекции яровой мягкой пшеницы // Аграрн. наука Евро-Северо-Востока. 2014. Т. 39. № 2. С. 10-13.
- Тимергалина Л.Н., Иванов Р.С., Никонов В.И., Иванов И.И. Сравнительная оценка транспирации, роста корней и гидравлической проводимости у растений пшеницы, различающихся по урожайности в условиях засухи // Экобиотех. 2020. Т. 3. № 4. С. 734-740. https://doi.org/10.31163/2618-964X-2020-3-4-734- 740
- Круглова Н.Н., Сельдимирова О.А., Зинатуллина А.Е., Никонов В.И. Выявление засухоустойчивых генотипов в культуре незрелых зародышей in vitro // Вестн. Башкир. ГАУ. 2019. № 4. С. 37—41. https://doi.org/10.31563/1684-7628-2019-52-4-37-41
- Ziarovskd J., Medo J., Kysel M., Zamieskovd L., Kac'dniovd M. Endophytic bacterial microbiome diversity in early developmental stage plant tissues of wheat varieties // Plants. 2020. № 9. P. 266. https://doi.org/10.339 0/plants9020266
- Valente J., Gerin F., Le Gouis J., Moënne-Loccoz Y., Prigent-Combaret C. Ancient wheat varieties have a higher ability to interact with plant growth-promoting rhizobacteria // Plant Cell Environ. 2020. V. 43. № 1. P. 246-260. https://doi.org/10.1n1/pce.13652
- Гарипова С.Р, Гарифуллина Д.В., Маркова О.В., Уразбахтина Н.А., Хайруллин Р.М. Комплексная биологическая активность in vitro эндофитных бактерий, выделенных из клубеньков гороха и фасоли // Изв. Уфим. НЦ РАН. 2015. № 4-1. С. 25-28.
- Курамшина З.М., Хайруллин Р.М., Смирнова Ю.В. Сортовая отзывчивость Triticum aestivum L. на инокуляцию клетками эндофитных штаммов Bacillus subtilis // Рос. сел.-хоз. наука. 2019. № 6. С. 3-6. https://doi.org/10.31857/S2500-2627201963-6
- Коршунова Т.Ю., Кузина Е.В., Рафикова Г.Ф., Тимергалин М.Д., Рамеев Т.В., Четверикова Д.В., Феоктистова А.В., Низаева А.А., Четвериков С.П. Бактеризация семян кормовых трав: влияние на прорастание и рост растений // Биомика. 2021. Т. 13. № 2. С. 159-165. https://doi.org/10.31301/2221-6197.bmcs.2021-12
- Deivanai S., Bindusara A.S., Prabhakaran G., Bhore S.J. Culturable bacterial endophytes isolated from Mangrove tree (Rhizophora apiculata Blume) enhance seedling growth in Rice // J. Nat. Sci. Biol. Med. 2014. V. 5. № 2. P. 437-444. https://doi.org/10.4103/0976-9668.136233
- Архипова Т.Н., Кузьмина Л.Ю., Кудоярова Г.Р. Влияние титра микроорганизмов на результаты их ростстимулирующей активности в условиях гетеротрофного питания растений // Экобиотех. 2018. Т. 1. № 2. С. 97-104. https://doi.org/10.31163/2618-964X-2018-1-2-97-104
- Гильванова Е.А., Мильман П.Ю. Биосинтез ауксина и каротина PGPR-бактерий Pantoea sp. на питательных средах различного состава // Биомика. 2020. Т. 12. № 2. С. 218-223. https://doi.org/10.31301/2221-6197.bmcs.2020-12
- Gu Y-H., Mazzola M. Impact of carbon starvation on stress resistance, survival in soil habitats and biocontrol ability of Pseudomonas putida strain 2C8 // Soil Biol. Biochem. 2001. V. 33. № 9. P. 1155-1162. https://doi.org/10.1016/S0038-0717(01)00019-0
- Teixido N., Usall J., Torres R. Insight into a successful development of biocontrol agents: Production, formulation, packaging, and shelf life as key aspects // Horticulture. 2022. V. 8. № 4. P. 305. DOI: org/ https://doi.org/10.3390/horticulturae8040305
- O'Callaghan M. Microbial inoculation of seed for improved crop performance: issues and opportunities // Appl. Microbiol. Biotechnol. 2016. V. 100. № 13. P. 5729-5746. https://doi.org/10.1007/s00253-016-7590-9
- Rocha I., Ma Y., Souza-Alonso P., Vosdtka M., Freitas H., Oliveira R.S. Seed coating: A tool for delivering beneficial microbes to agricultural crops // Front Plant Sci. 2019. V. 6. № 10. P. 1357. https://doi.org/10.3389/fpls.2019.01357
- Renoud S., Abrouk D., Prigent-Combaret C. Effect of inoculation level on the impact of the PGPR Azospirillum lipoferum CRT1 on selected microbial functional groups in the rhizosphere of field maize // Microorganisms. 2022. V. 10. № 2. P. 325. https://doi.org/10.3390/microorganisms10020325
- Нетрусов А.И., Егорова М.А., Захарчук Л.М. Практикум по микробиологии / Под ред. А.И. Нетрусова. М.: Изд. центр “Академия”, 2005. С. 161, 571572.
- Persello-Cartieaux F., Nussaume L., Robaglia C. Tales from the underground: molecular plant-rhizobacteria interactions // Plant Cell Environ. 2003. V. 26. P. 189199. https://doi.org/10.1046/j.1365-3040.2003.00956.x
- Иванчина Н.В., Гарипова С.Р., Хайруллин Р.М. Влияние дозы клеток эндофитных штаммов Bacillus subtilis, продуцирующих индолил-3-уксусную кислоту, на рост и продуктивность гороха (Pisum sativum L.) // Агрохимия. 2018. №. 4. С. 39-44. https://doi.org/10.7868/S0002188118040051
- Xie H., Pasternak J.J., Glick B.R. Isolation and characterization of mutants of the plant growth-promoting rhizobacterium Pseudomonas putida CR12-2 that overproduce indoleacetic acid // Curr. Microbiol. 1996. V. 32. P. 67-71. https://doi.org/10.1007/s002849900012
- Gang S., Saraf M., Waite C.J., Buck M., Schumacher J. Mutualism between Klebsiella SGM 81 and Dianthus caryophyllus in modulating root plasticity and rhizo- spheric bacterial density // Plant Soil. 2018. V. 421. № 1. P. 273-288. https://doi.org/10.1007/s11104-017-3440-5
- Malik D.K., Sindhu S.S. Production of indole acetic acid by Pseudomonas sp.: Effect of coinoculation with Mesorhizobium sp. Cicer on nodulation and plant growth of chickpea (Cicer arietinum) // Physiol. Mol. Biol. Plants. 2011. V. 17. № 1. P. 25-32. https://doi.org/10.1007/s12298-010-0041-7
- Shahid A.P., Zahoor A.B. Isolation and characterization of indole-3-acetic acid producing bacterial root endophytes associated with brown sarson (Brassica rapa L.) // Int. J. Adv. in Sci. Eng. Technol. 2017. V. 5. № 3. P. 69-74. http://www.iraj.in/journal/journal_- file/journal_pdf/6-390-150513318669-74.pdf
- Gaimster H, Summers D. Regulation of indole signalling during the transition of E. coli from exponential to stationary phase // Plos One. 2015. V. 10. № 9. e0136691. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0136691
Дополнительные файлы
