Характерные параметры ненасыщенных ацильных остатков при жидкостной хроматографии липидов в средах с ионами серебра

Обложка

Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Только для подписчиков

Аннотация

Обобщены результаты жидкостной хроматографии сложной смеси молекул ненасыщенных липидов как основы гидрофобного матрикса биомембран. Данные относительного удерживания таких липидов, включавших остатки наиболее важных жирных кислот, позволили рассчитать те наиболее характерные общие параметры, которые удовлетворительно определяют их поведение при внесении соли серебра в планарную или колоночную жидкостно-хроматографическую систему с целью резкого увеличения селективности разделения молекул ненасыщенных липидов между собой. Предложен вариант количественной оценки взаимосвязи уровня селективности отделения друг от друга отдельных молекул липидов природного происхождения с предлагаемыми параметрами входящих в их состав остатков жирных кислот, которые рассчитаны на базе вариаций химического потенциала таких молекул при появлении серебра в этой системе.

Полный текст

Доступ закрыт

Об авторах

В. П. Пчёлкин

ФГБУН “Институт физиологии растений имени К. А. Тимирязева РАН”

Автор, ответственный за переписку.
Email: bas1953@mail.ru
Россия, Москва

Список литературы

  1. Zhang C.-W., Wang C.-Z., Tao R., Ye J.-Z. // J. Chromatogr. A. 2019. V. 1590. P. 58. doi: 10.1016/j.chroma.2019.01.047
  2. Lu H., Zhu H., Dong H., et al. // J. Chromatogr. A. 2019. V. 1613. № 460660. P. 1–7 doi: 10.1016/j.chroma.2019.460660
  3. Huang S., Qui R., Fang Z., et al. // Anal. Chem. 2022. V. 94. P. 13710. doi: 10.1021/acs.analchem.2c01627
  4. Ullah Q. // J. Planar Chromatogr. Modern TLC. 2020. V. 33. P. 329. doi: 10.1007/s00764-020-00048-7
  5. Yoon J., Choi E., Min K. // J. Phys. Chem. A. 2021. V. 125. № 46. P. 10103. doi: 10.1021/acs.jpca.1c05292
  6. Hamieh T. // J. Chromatogr. Sci. 2022. V. 60. № 2. P. 126. doi: 10.1093/chromsci/bmab066
  7. Petersen M.L., Hirsch J. // J. Lipid. Res. 1959. V. 1. P. 152.
  8. Ren Q.H., Rybicki M., Sauer J. // J. Phys. Chem. C. 2020. V. 124. № 18. P. 10067. doi: 10.1021/acs.jpcc.0c003061
  9. Vysotsky Y.B., Kartashynska E.S., Vollhardt D., et al. // J. Phys. Chem. C. 2020. V. 124. № 25. P. 13809. doi: 10.1021/acs.jpcc.0c03785
  10. Leasor C., Chen K.-H., Closson T., Li Z. // J. Phys. Chem. C. 2019. V. 123. № 22. P. 13600. doi: 10.1021/acs.jpcc.9b01705
  11. Nikolova-Damyanova B., Christie W.W., Herslöf B.G. // J. Chromatogr. A. 1993. V. 653. № 1. P. 15.
  12. Vahmani P., Rolland D.C., Gzyl K.E., Dugan M.E.R. // Lipids. 2016. V. 51. № 12. P. 1427. doi: 10.1007/s11745-016-4207-0
  13. Dabrowska M., Sokalska K., Gumulka P., et al. // JPC-J. Planar Chromatogr. –Modern TLC. 2019. V. 32. № 1. P. 13. doi: 10.1556/1006.2019.32.1.2
  14. Пчелкин В.П., Верещагин А.Г. // Докл. АН СССР. 1991. Т. 318. № 2. С. 473.
  15. Pchelkin V.P., Vereshchagin A.G. // J. Chromatogr. 1991. V. 538. № 2. P. 373.
  16. Pchelkin V.P., Vereshchagin A.G. // J. Chromatogr. 1992. V. 603. P. 213.
  17. Pchelkin V.P. // Russ. J. Phys. Chem. 2000. V. 74. P. 625.
  18. Пчёлкин В.П. // Журн. физ. химии. 2003. Т. 77. № 9. С. 1652.
  19. Пчёлкин В.П. // Журн. физ. химии. 2016. V. 90. № 9. P. 409. doi: 10.6878/S1004445371690235
  20. Pchelkin V.P. // J. Anal. Chem. 2020. V. 75. № 5. P. 615. doi: 10.1134/S1061934820050159
  21. Pchelkin V.P. // Current Chromatogr. 2022. V. 9. № 2. P. 1. DOI: 10.2174/ 2213240609666220120120113938
  22. Mahato P., Mandal K., Agrawai S., et al. // J. Phys. Chem. Lett. 2024. V. 15. № 2. P. 461. doi: 10.1021/acs.lett.3c03188
  23. Bhowmick S., Maisser A., Suleimanov Y.V., et al. // J. Phys. Chem. A. 2022. V. 128. № 37. P. 6376. doi: 10.1021/acs.jpca.2c02809
  24. Andryushechkin B.V., Pavlova T.V., Shevlyuga V.M. // Phys. Chem. Chem. Phys. 2024. V. 26. № 2. P. 1322. doi: 10.1039/D3CP04962K
  25. Yasumura S., Kato T., Toyao T., et al. // Phys. Chem. Chem. Phys. 2023. V. 25. P. 8524. doi: 10.1039/d2cp04761f
  26. Gao H., Bi S., Chai J., et al. // J. Chrom. A. 2024. V. 1714. № 464579. P. 1. doi: 10.1016/j.chroma.2023.464579
  27. Arroyave J.M., Ambrusi R.E., Pronsato M.E., et al. // J. Phys. Chem. B. 2020. V. 124. № 12. P. 2425. doi: 10.1021/acs.jpcb.9b10430
  28. Bigi F., Cera G., Maggi R., et al. // J. Phys. Chem. A. 2021. V. 125. № 46. P. 10035. doi: 10.1021/acs.jpca.1c07253
  29. Jayalatharachchi V., MacLeod J., Lipton-Duffin J. // J. Phys. Chem. C. 2021. V. 125. № 26. P. 14326. doi: 10.1021/acs.jpcc.1c02581
  30. Krzykawska A., Szwed M., Ossowski J., Cyganik P. // J. Phys. Chem. C. 2018. V. 122. № 1. P. 919. doi: 10.1021/acs.jpcc.7b10806
  31. Du Z., Ding P., Tai X., et al. // Langmuir. 2018. V. 34. № 23. P. 6922. doi: 10.1021/acs.langmuir.8b00640
  32. Rathnakumar S., Bhaskar S., Sivaramakrishnan V., et al. // Anal. Chem. 2024. V. 96. № 10. P. 4005. DOI: 1021/acs.analchem.3c01441

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать
2. Рис. 1. Участки шкалы гидрофобности липидных молекул HBᵢ

Скачать (389KB)
Метаданные
3. Рис. 2. Номинальные уровни главного (ψUns, столбцы черного цвета) параметра остатков олеиновой (Ole), линолевой (Lin) и α-линоленовой (αLnn) кислот, а также значения дополняющего (εUns, столбцы белого цвета) и суммирующего (λUns, столбцы серого цвета) параметров [17, 18] по данным Ag⁺-ОФ ТСХ rac-1,2-Ole₂Gro, rac-1,2-Lin₂Gro и rac-1,2-Lnn₂Gro [14], а также Ag⁺-ОФ ВЭЖХ фенэтиловых и фенациловых эфиров этих кислот [11].

Скачать (92KB)
Метаданные
4. Рис. 3. Номинальные уровни параметра ψUns (столбцы серого цвета) и найденные по данным Ag⁺-ОФ ВЭЖХ [11] значения λUns остатков арахидоновой (AchΔ₄), эйкозапентаеновой (EPA) и докозагексаеновой (DHA) кислот в составе фенэтиловых и фенациловых эфиров (столбцы белого и черного цвета соответственно [17, 18]).

Скачать (112KB)
Метаданные

© Российская академия наук, 2025